Biopolym. Cell. 2006; 22(4):283-289.
 Структура та функції біополімерів
Дослідження взаємодії ізольованого С-модуля 
тирозил-тРНК синтетази з тРНК методом 
флуоресцентної спектроскопії
- Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
 Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680
Abstract
Не каталітичний С-модуль тирозил-тРНК синтетази ссавців має подвійну функцію: бере участь 
у зв' язуванні тРНК як цис-фактор та після протеолітичного відщеплення від каталітичного кора синтетази проявляє иитокінову активність подібно до цитокіну ЕМАР II. С-модуль TyrRS 
містить залишок триптофану Trp144, який є флуоресцентним зондом у структурі білка, однак локалізований поза сайтом зв'язування РНК. Для дослідження взаємодії ізольованого С-модуля з 
тРНК консервативний ароматичний залишок Phe127 у РНК-зв' язу вальному центрі методами 
сайт-спрямованого мутагенезу було замінено на флуорофор Trp127. Це дозволило суттєво 
підвищити квантовий вихід флуоресценції білка та визначити параметри зв'язування С-модуля з 
тРНК. На основі даних спектрофлуориметричного титрування визначено величину константи 
дисоціації комплексу С-модуля з тPHKPhe, яка складає 2,9-10–8
 М, та стехіометрію комплексу 
(n = 1,2). 
Keywords: тирозил-тРНК синтетаза, мутагенез, флуоресценція
Повний текст:  (PDF, українською)
References
  [1]
  Mirande M. Aminoacyl-tRNA synthetase family from prokaryotes and eukaryotes: structural domains and their implications. Prog Nucleic Acid Res Mol Biol. 1991;40:95-142.      
  [2]
  Bonnefond L, Gieg? R, Rudinger-Thirion J. Evolution of the tRNA(Tyr)/TyrRS aminoacylation systems. Biochimie. 2005;87(9-10):873-83.     
  [3]
  Kornelyuk AI. Structural and functional investigation of mammalian tyrosyl-tRNA synthetase. Biopolym Cell. 1998; 14(4):349-59.  
  [4]
  Kornelyuk AI, Tas MPR, Dubrovsky AL, Murray JC. Cytokine activity of the non-catalytic EMAP-2-like domain of mammalian tyrosyl-tRNA synthetase. Biopolym. Cell. 1999; 15(2):168-72.  
  [5]
  Wakasugi K, Schimmel P. Two distinct cytokines released from a human aminoacyl-tRNA synthetase. Science. 1999;284(5411):147-51.    
  [6]
  Quevillon S, Agou F, Robinson JC, Mirande M. The p43 component of the mammalian multi-synthetase complex is likely to be the precursor of the endothelial monocyte-activating polypeptide II cytokine. J Biol Chem. 1997;272(51):32573-9.    
  [7]
  Simos G, Segref A, Fasiolo F, Hellmuth K, Shevchenko A, Mann M, Hurt EC. The yeast protein Arc1p binds to tRNA and functions as a cofactor for the methionyl- and glutamyl-tRNA synthetases. EMBO J. 1996;15(19):5437-48.    
  [8]
  Kushiro T, Schimmel P. Trbp111 selectively binds a noncovalently assembled tRNA-like structure. Proc Natl Acad Sci U S A. 2002;99(26):16631-5.       
  [9]
  Shalak V, Kaminska M, Mitnacht-Kraus R, Vandenabeele P, Clauss M, Mirande M. The EMAPII cytokine is released from the mammalian multisynthetase complex after cleavage of its p43/proEMAPII component. J Biol Chem. 2001;276(26):23769-76.     
  [10]
  Murzin AG. OB(oligonucleotide/oligosaccharide binding)-fold: common structural and functional solution for non-homologous sequences. EMBO J. 1993;12(3):861-7.    
  [11]
  Moras D. Structural aspects and evolutionary implications of the recognition between tRNAs and aminoacyl-tRNA synthetases. Biochimie. 1993;75(8):651-7.     
  [12]
  Kordysh MA, Odynets KA, Kornelyuk AI. Trp144 as a fluorescence probe for investigation of the C-module rapid conformation dynamics in eukaryotic tyrosyle-tRNA synthetase. Biopolym Cell. 2003; 19(5):436-9.  
  [13]
  Kordysh MA, Kornelyuk AI. The monitoring of conformational changes of the Trp144 residue environment in C-module of tyrosyl-tRNA synthetase undr heat denaturation. Dopovidi Nats Akad Nauk Ukrainy. 2004; (1):156-61.
  [14]
  Kordysh MA, Kornelyuk AI. Fluorescence and dynamics of structural environment of TRP125 fluorophore in EMAP II cytokine. Biofiz Vistn. 2003; Iss.(13): 38-41.
  [15]
  Kordysh MA, Dubrovsky OL, Kornelyuk AI. Local conformational transition of Trp125 in EMAP II cytokine inducted by physiological temperature. Physics of the Alive. 2005; 13(1):79–85.
  [16]
  Dubrovsky AL, Brown Jn, Kornelyuk AI, Murray JC, Matsuka GKh. Bacterial expression of full-length and truncated forms of cytokine EMAP-2 and cytokine-like domain of mammalian tyrosyl-tRNA synthetase. Biopolym Cell. 2000; 16(3):229-235.  
  [17]
  Kanibolotskiy DS, Odynets KA, Skurskiy SI, Kornelyuk AI. Study of intramolecular mobility of cytokine-like C-terminal module of tyrosyl-mammalian tRNA synthetase by molecular dynamics. Physics live. 2003; 11(2):61-71.
  [18]
  Roy S. Fluorescence quenching methods to study protein-nucleic acid interactions. Methods Enzymol. 2004;379:175-87.    
  [19]
  Golub A, Petrushenko Z, Odynets K, Dubrovsky A, Rozhko O, Matsuka G, Solecka K, Olszak K, Przykorska A, Kornelyuk A. Cytokine-like C-terminal module of mammalian tyrosyl-tRNA synthetase reveals structure-specific tRNA bind ing: Computational docking modeling and footprint analysis. Aminoacyl-tRNA synthetases in biology, medicine, and evolution. Asilomar, 2002: 116.
  [20]
  Renault L, Kerjan P, Pasqualato S, M?n?trey J, Robinson JC, Kawaguchi S, Vassylyev DG, Yokoyama S, Mirande M, Cherfils J. Structure of the EMAPII domain of human aminoacyl-tRNA synthetase complex reveals evolutionary dimer mimicry. EMBO J. 2001;20(3):570-8.      
  [21]
  Lakowicz J. R. Principles of fluorescent spectroscopy. 2nd Edition. New York: Plenum Press, 1999. 725 p.  
  [22]
  Reshetnyak YK, Koshevnik Y, Burstein EA. Decomposition of protein tryptophan fluorescence spectra into log-normal components. III. Correlation between fluorescence and microenvironment parameters of individual tryptophan residues. Biophys J. 2001;81(3):1735-58.      
